Ukr.Biochem.J. 2021; Том 93, № 5, вересень-жовтень, c. 31-42

doi: https://doi.org/10.15407/ubj93.05.031

Загальний гемостатичний потенціал плазми крові та його зв’язок із молекулярними маркерами системи гемостазу в пацієнтів зі стенозом коронарної артерії

04.01.2022   Uncategorized   No comments

Н. B. Сторожук1, Л. В. Пирогова2, Т. М. Чернишенко2,
О. П. Костюченко2, Т. М. Платонова2, О. Б. Сторожук1,
Б. Г. Сторожук1, Г. К. Березницький2, Є. М. Макогоненко2*

1Вінницький національний медичний університет ім. М. І. Пирогова, Україна;
2Інститут біохімії ім. О. В. Палладіна НАН України, Київ;
*e-mail: ymakogonenko@gmail.com

Отримано: 01 квітня 2021; Затверджнено: 22 вересня 2021

Вивчали зв’язок між показниками гемостатичного потенціалу та концентраціями молекулярних маркерів системи гемостазу: розчинного фібрину (sf), D-димеру (DD), фібриногену (Fg) та протеїну C (PC) в пацієнтів зі стенозом коронарної артерії через 6 місяців після стентування. У хворих було виявлено три напрями зміни стану системи гемостазу: збільшення фібринолітичної активності у ~18% пацієнтів; збільшення коагуляційної активності (В) у ~31% пацієнтів; підтримка балансу між згортанням і фібринолізом (А) в ~51% пацієнтів. У пацієнтів зі стенозом без ознак стенокардії продемонстровано сильну кореляцію за Пірсоном між часом напівлізису згустку та загальним гемостатичним потенціа­лом (ЗГП) (r = 0,75, P << 0,05), помірна залежність між концентраціями sf – D-димер (r = 0,67, P < 0,05), майже повний зв’язок між потенціалом згортання (ЗП) і ЗГП (r = 0,975, P << 0,05) та сильний зв’язок між ЗП і фібринолітичним потенціалом (ФП) (r = 0,80, P << 0,05). У пацієнтів із ознаками стабільної стенокардії виявлено майже повний зв’язок між концентрацією sf та D-димеру (r = 0,981, P << 0,05), ЗП і ЗГП (r = 0,979, P << 0,05) та сильний зв’язок між ЗП та ФП (r = 0,846, P << 0,05). Обговорюються можливі функціональні механізми зв’язку між цими параметрами.

Ключові слова: , , , ,

Посилання:

  1. Marzilli M, Merz CN, Boden WE, Bonow RO, Capozza PG, Chilian WM, DeMaria AN, Guarini G, Huqi A, Morrone D, Patel MR, Weintraub WS. Obstructive coronary atherosclerosis and ischemic heart disease: an elusive link! J Am Coll Cardiol. 2012;60(11):951-956. PubMed, CrossRef
  2. Pepine CJ, Douglas PS. Rethinking stable ischemic heart disease: is this the beginning of a new era? J Am Coll Cardiol. 2012;60(11):957-959. PubMed, CrossRef
  3. Lerman A, Zeiher AM. Endothelial function: cardiac events. Circulation. 2005;111(3):363-368. PubMed,CrossRef
  4. Libby P, Ridker PM, Maseri A. Inflammation and atherosclerosis. Circulation. 2002;105(9):1135-1143. PubMed, CrossRef
  5. Cunningham KS, Gotlieb AI. The role of shear stress in the pathogenesis of atherosclerosis. Lab Invest. 2005;85(1):9-23. PubMed, CrossRef
  6. Zhou J, Li YS, Chien S. Shear stress-initiated signaling and its regulation of endothelial function. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014;34(10):2191-2198. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  7. Dong JF. Cleavage of ultra-large von Willebrand factor by ADAMTS-13 under flow conditions. J Thromb Haemost. 2005;3(8):1710-1716. PubMed,  CrossRef
  8. Owens AP 3rd, Mackman N. Microparticles in hemostasis and thrombosis. Circ Res. 2011;108(10):1284-1297. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  9. Cui Y, Zheng L, Jiang M, Jia R, Zhang X, Quan Q, Du G, Shen D, Zhao X, Su W, Xu H, Huang L. Circulating microparticles in patients with coronary heart disease and its correlation with interleukin-6 and C-reactive protein. Mol Biol Rep. 2013;40(11):6437-6442. PubMed, CrossRef
  10. Wang Y, Zhang S, Luo L, Norström E, Braun OÖ, Mörgelin M, Thorlacius H. Platelet-derived microparticles regulates thrombin generation via phophatidylserine in abdominal sepsis. J Cell Physiol. 2018;233(2):1051-1060. PubMed, CrossRef
  11. Vasina E, Heemskerk JWM, Weber C, Koenen RR. Platelets and platelet-derived microparticles in vascular inflammatory disease. Inflamm Allergy Drug Targets. 2010;9(5):346-354. PubMed, CrossRef
  12. Storozhuk BG, Pyrogova LV, Chernyshenko TM, Kostiuchenko OP, Kolesnikova IM, Platonova TM, Storozhuk OB, Storozhuk LO, Bereznitsky GK, Tsap PYu, Masenko OO, Makogonenko EM, LugovskoyEV. Overall hemostasis potential of the blood plasma and its relation to some molecular markers of the hemostasis system in patients with chronic renal disease of stage VD. Ukr Biochem J. 2018;90(5):60-70. CrossRef
  13. Pyrogova LV, Chernyshenko TM, Kolesnikova IN, Platonova TN, Bereznitsky GK, Makogonenko YM, Lugovskoy EV. Level of overall hemostasis potential in donor and patient plasma in pathology. Ukr Biochem J. 2016;88(2):56-65. PubMed, CrossRef
  14. Lugovskoi EV, Kolesnikova IN, Lugovskaya NE, Litvinova LM, Gritsenko PG, Gogolinskaya GK, Lyashko ED, Kostyuchenko EP, Remizovsky GA, Pedchenko VN, Komisarenko SV. Quantification of D-dimer and soluble fibrin in blood plasma of people with ischemic heart disease and hypertension. Ukr Biokhim Zhurn. 2004;76(6):136-141. (In Russian). PubMed
  15. Lugovskoi EV, Kolesnikova IN, Lugovskaya NE, Gritsenko PG, Litvinova LM, Gogolinskaya GK, Lyashko ED, Kostyuchenko EP, Golota VI, Kurochka VV, Komisarenko SV. Soluble fibrin and D-dimer at normal pregnancy and pregnancy with risk of miscarriage. Ukr Biokhim Zhurn. 2006;78(4):120-129. (In Russian). PubMed
  16. Makogonenko EM, Kirpa SA, Lugovskoi EV, Nazarenko NA, Kudinov SA. Kinetics of glu- and lys-plasminogen activation by the tissue activator in a fibrin clot. Biokhimiia. 1987;52(10):1746-1752. (In Russia). PubMed
  17. Robbie LA, Booth NA, Croll AM, Bennett B. The roles of alpha 2-antiplasmin and plasminogen activator inhibitor 1 (PAI-1) in the inhibition of clot lysis. Thromb Haemost. 1993;70(2):301-306. PubMed, CrossRef
  18. Huebner BR, Moore EE, Moore HB, Stettler GR, Nunns GR, Lawson P , Sauaia A, Kelher M, Banerjee A, Silliman CC. Thrombin Provokes Degranulation of Platelet α-Granules Leading to the Release of Active Plasminogen Activator Inhibitor-1 (PAI-1). Shock. 2018;50(6):671-676. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  19. Rühl H, Berens C, Winterhagen A, Müller J, Oldenburg J, Pötzsch B. Label-Free Kinetic Studies of Hemostasis-Related Biomarkers Including D-Dimer Using Autologous Serum Transfusion. PLoS One. 2015;10(12):e0145012. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  20. Strickland DK, Medved L. Low-density lipoprotein receptor-related protein (LRP)-mediated clearance of activated blood coagulation co-factors and proteases: clearance mechanism or regulation? J Thromb Haemost. 2006;4(7):1484-1486. PubMed, CrossRef
  21. Bagoly Z, Ariëns RAS, Rijken DC , Pieters M, Wolberg AS. Clot Structure and Fibrinolysis in Thrombosis and Hemostasis. Biomed Res Int. 2017;2017:4645137. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  22. Weisel JW, Litvinov RI. The biochemical and physical process of fibrinolysis and effects of clot structure and stability on the lysis rate. Cardiovasc Hematol Agents Med Chem. 2008;6(3):161-180. PubMed, CrossRef
  23. Diamond SL. Systems Analysis of Thrombus Formation. Circ Res. 2016;118(9):1348-1362. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  24. Suenson E, Bjerrum P, Holm A, Lind B, Meldal M, Selmer J, Petersen LC. The role of fragment X polymers in the fibrin enhancement of tissue plasminogen activator-catalyzed plasmin formation. J Biol Chem. 1990;265(36):22228-22237. PubMed, CrossRef
  25. Page EM, Ariëns RAS. Mechanisms of thrombosis and cardiovascular complications in COVID-19. Thromb Res. 2021;200:1-8. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  26. Nilsen DW, Brosstad F. Discrepant elimination of fibrin des-AA and des-AABB in man. Thromb Haemost. 1986;55(3):439. PubMed, CrossRef
  27. Nilsen DW, Brosstad F, Holm B, Kierulf P, Gravem K, Godal HC. Thrombus-related uptake and vascular clearance of 131 I-fibrin des-AABB as compared to 125 I-fibrinogen in patients with established venous thrombosis. Thromb Haemost. 1984;51(2):165-168.  PubMed, CrossRef
  28. Nilsen DW, Brosstad F, Holm B, Kierulf P, Godal HC. Clearance characteristics of des-AA fibrin and des-AABB fibrin, and thrombus-related uptake of des-AABB fibrin as compared to fibrinogen. Scand J Clin Lab Invest Suppl. 1985;178:115-119. PubMed
  29. Rajagopalan S, Pizzo SV. Characterization of murine peritoneal macrophage receptors for fibrin(ogen) degradation products. Blood. 1986;67(5):1224-1228. PubMed, CrossRef
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.