Ukr.Biochem.J. 2017; Том 89, № 2, березень-квітень, c. 116-120

doi: https://doi.org/10.15407/ubj89.02.116

Новий метод із використанням дітіотреїтолу для усунення впливу холодової аглютинації на результати аналізу крові (a case study)

Hamit Yasar Ellidag*, Sibel Kulaksizoglu, Esin Eren, Necat Yilmaz

Central Laboratories of Antalya Training and Research Hospital, Antalya, Turkey;
e-mail: hayael1980@hotmail.com

Хвороба холодових аглютинінів – автоімунне захворювання, при якому антитіла атакують полісахаридні антигени на власних еритроцитах­. Аглютинація та гемоліз еритроцитів призводять до хибних результатів багатьох лабораторних досліджень у пацієнтів з цим захворюванням, особливо результатів загального аналізу крові (ЗАК) та мазків периферичної крові. У нашій лабораторії ми зіткнулися зі зразком крові 65-річного чоловіка, в якого було діагностовано хворобу холодових аглютинінів і не вдавалося отримати вірогідні результати ЗАК або аналізу мазків периферичної крові. У пацієнта було відібрано свіжі зразки крові і проведено повторно ЗАК і аналіз мазків периферичної крові з/без інкубування на водяній бані при 37 °С. Крім того, до зразків крові, які не піддавалися термічній обробці, перед проведенням аналізу, додавали різну кількість дітіотреїтолу (ДТТ). Термічна обробка при 37 °С різної тривалості не дозволила поліпшити результати ЗАК і аналізу мазків периферичної крові. У той самий час, додавання ДТТ до зразків крові в 2-мл пробірках K3-EDTA дозволило уникнути впливу процесу холодової аглютинації на результати ЗАК і мазків периферичної крові. Наведений метод свідчить про перспективність застосування ДТТ для усунення негативного впливу холодової аглютинації за проведення ЗАК і аналізу мазків периферичної крові в пацієнтів із хворобою холодових аглютинінів. Перевагами методу є його простота та швидкість.

Ключові слова: , ,


Посилання:

  1. Swiecicki PL, Hegerova LT, Gertz MA. Cold agglutinin disease. Blood. 2013 Aug 15;122(7):1114-21. Review. PubMed, CrossRef
  2. Berentsen S, Ulvestad E, Langholm R, Beiske K, Hjorth-Hansen H, Ghanima W, Sørbø JH, Tjønnfjord GE. Primary chronic cold agglutinin disease: a population based clinical study of 86 patients. Haematologica. 2006 Apr;91(4):460-6. PubMed
  3. Berentsen S. How I manage cold agglutinin disease. Br J Haematol. 2011 May;153(3):309-17. Review. PubMed, CrossRef
  4. Lechner K, Jäger U. How I treat autoimmune hemolytic anemias in adults. Blood. 2010 Sep 16;116(11):1831-8. Review. PubMed, CrossRef
  5. Ercan S, Calışkan M, Koptur E. 70-year old female patient with mismatch between hematocrit and hemoglobin values: the effects of cold agglutinin on complete blood count. Biochem Med (Zagreb). 2014 Oct 15;24(3):391-5.  PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  6. Solanki DL, Blackburn BC. Spurious red blood cell parameters due to serum cold agglutinins: observations on Ortho ELT-8 cell counter. Am J Clin Pathol. 1985 Feb;83(2):218-22. PubMed
  7. Kalyani R, Thej MJ, Thomas AK, Raveesha A. Chronic Cold Agglutinin Disease: A Case Report with Review of Literature. J Clin Diagn Res. 2012 May (Suppl-1), Vol-6(3):480-482.
  8. Arndt PA, Leger RM, Garratty G. Serologic findings in autoimmune hemolytic anemia associated with immunoglobulin M warm autoantibodies. Transfusion. 2009 Feb;49(2):235-42.  PubMed, CrossRef
  9. Cleland WW. Dithiothreitol, a New Protective Reagent for SH Groups. Biochemistry. 1964 Apr;3(4):480-2. PubMed, CrossRef
  10. Stevens R, Stevens L, Price NC. The stabilities of various thiol compounds used in protein purifications. Biochem Educ. 1983;11(2): 70. CrossRef
  11. Klein GC, Behan KA. Determination of brucella immunoglobulin G agglutinating antibody titer with dithiothreitol. J Clin Microbiol. 1981 Jul;14(1):24-5. PubMed, PubMedCentral

Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.