Ukr.Biochem.J. 2013; Том 85, № 6, листопад-грудень, c. 144-150

doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj85.06.144

Специфічне пригнічення лейкемічних онкогенів із використанням підходу РНК-інтерференції

19.04.2016   Без категорії   No comments

Т. Д. Лебедєв1, П. В. Спірін1, Н. Н. Орлова1,
А. С. Горностаєва1, С. Стокінг2, В. С. Прассолов1*

1Інститут молекулярної біології ім. В. О. Енгельгардта, РАН, Москва, Росія;
2Інститут експериментальної вірусології і імунології Генріха-Петте, Гамбург, Німеччина;
*e-mail: prassolov45@mail.ru

РНК-інтерференція є ефективним природним механізмом посттранскрипційної модуляції генної експресії. Механізм РНК-інтерференції є у вищих евкаріотів – тварин і рослин, а також у нижчих евкаріотів і вірусів. На сьогодні РНК-інтерференція використовується як потужний інструмент для вивчення функціональної активності генів. За допомогою цього підходу вдалося досягти результатів, що мають істотне значення для фундаментальної біології. Відомо, що РНК-інтерференція може використовуватися у виробництві лікарських препаратів для лікування злоякісних, інфекційних та спадкових хвороб. Однією з основних проблем цих розробок є пошук ефективних методів переносу siРНК в клітини-мішені. Для цих цілей використовуються різні види трансфекції або вірусна трансдукція. У статті представлено результати порівняння пригнічення експресії онкогену AML-ETO за допомогою синтетичної siРНК та кодування за допо­могою рекомбінантних лентивірусів для відповідної shРНК.

Ключові слова: , ,

Посилання:

  1. Vil’gel’m AE, Chumakov SP, Prasolov VS. RNA interference: biology and perspectives of application in biomedicine and biotechnology. Mol Biol. (Mosk). 2006 May-Jun;40(3):387-403. Review. Russian. PubMed
  2. Volkov AA, Kruglova NS, Meschaninova MI, Venyaminova AG, Zenkova MA, Vlassov VV, Chernolovskaya EL. Selective protection of nuclease-sensitive sites in siRNA prolongs silencing effect. Oligonucleotides. 2009 Jun;19(2):191-202. PubMed, CrossRef
  3. Shuey DJ, McCallus DE, Giordano T. RNAi: gene-silencing in therapeutic intervention. Drug Discov Today. 2002 Oct 15;7(20):1040-6. Review. PubMed
  4. Stanisławska J, Olszewski WL. RNA interference–significance and applications. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 2005 Jan-Feb;53(1):39-46. Review. PubMed
  5. Elbashir SM, Harborth J, Weber K, Tuschl T. Analysis of gene function in somatic mammalian cells using small interfering RNAs. Methods. 2002 Feb;26(2):199-213. PubMed
  6. Brummelkamp TR, Bernards R, Agami R. A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells. Science. 2002 Apr 19;296(5567):550-3. PubMed
  7. Satake N, Maseki N, Kozu T, Sakashita A, Kobayashi H, Sakurai M, Ohki M, Kaneko Y. Disappearance of AML1-MTG8(ETO) fusion transcript in acute myeloid leukaemia patients with t(8;21) in long-term remission. Br J Haematol. 1995 Dec;91(4):892-8. PubMed
  8. Peterson LF, Zhang DE. The 8;21 translocation in leukemogenesis. Oncogene. 2004 May 24;23(24):4255-62. Review. PubMed
  9. Kravchenko JE, Ilyinskaya GV, Komarov PG, Agapova LS, Kochetkov DV, Strom E, Frolova EI, Kovriga I, Gudkov AV, Feinstein E, Chumakov PM. Small-molecule RETRA suppresses mutant p53-bearing cancer cells through a p73-dependent salvage pathway. Proc Natl Acad Sci USA. 2008 Apr 29;105(17):6302-7. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.