Ukr.Biochem.J. 2016; Том 88, № 3, травень-червень, c. 46-53
doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj88.03.046
Прооксидантно-антиоксидантний стан зародків в’юна за впливу амідних похідних 1,4-нафтохінону
А. О. Безкоровайний1,2, А. Р. Зинь2, Н. П. Гарасим1, Ю. Т. Лень2,3, О. М. Фігурка3, Д. І. Санагурський1
1Львівський національний університет імені Івана Франка, Україна;
2Львівський науково-дослідний експертно-криміналістичний центр МВС України;
3Національний університет «Львівська політехніка», Україна;
e-mail: andriy.bezkorovajnyj@gmail.com
Механізми порушень функціонування клітин, індуковані амідними похідними 1,4-нафтохінону залишаються недостатньо з’ясованими. У роботі досліджували особливості впливу цих похідних на про-/антиоксидантний гомеостаз зародків в’юна Misgurnus fossilis L. в період раннього ембріогенезу. Вивчали вплив 2-хлоро-3-гідрокси-1,4-нафтохінону, 2-хлоро-3-(3-оксо-3-(піпередин-1-іл)пропіламіно)-1,4-наф-тохінону (ФО-1), 2-хлоро-3-(3-(морфолін-4-іл)-3-оксопропіламіно)-1,4-нафтохінону (ФО-2) в концентраціях 10-3, 10-5, 10-7 М на вміст вторинних продуктів пероксидного окислення ліпідів (ТБК-активних продуктів), активність супероксиддисмутази і каталази зародків в’юна. Встановлено, що вміст ТБК-активних продуктів у зародкових клітинах за впливу амідних похідних 1,4-нафтохінону і вихідної сполуки їхнього синтезу (2-хлоро-3-гідрокси-1,4-нафтохінону) дозозалежно знижувався впродовж досліджуваного періоду, тоді як активність супероксиддисмутази та каталази, порівняно з контролем зростала. Результати двофакторного дисперсійного аналізу свідчать про те, що переважно на вміст ТБК-активних продуктів і активність супероксиддисмутази впливали 2-хлоро-3-гідрокси-1,4-нафтохінон та амідні похідні 1,4-нафтохінону (ФО-1 та ФО-2). Проте на роботу каталази значну дію мав час розвитку зародків в’юна у порівнянні з досліджуваними похідними 1,4-нафтохінону.
Ключові слова: амідні похідні 1_4-нафтохінону, зародки в’юна, каталаза, пероксидне окислення ліпідів, супероксиддисмутаза
Посилання:
- Kongkathip B, Akkarasamiyo S, Hasitapan K, Sittikul P, Boonyalai N, Kongkathip N. Synthesis of novel naphthoquinone aliphatic amides and esters and their anticancer evaluation. Eur J Med Chem. 2013 Feb;60:271-84. PubMed, CrossRef
- Wellington KW. Understanding cancer and the anticancer activities of naphthoquinones. RSC Advances. 2015;5(26): 20309-38. CrossRef
- Pradidphol N, Kongkathip N, Sittikul P, Boonyalai N, Kongkathip B. First synthesis and anticancer activity of novel naphthoquinone amides. Eur J Med Chem. 2012 Mar;49:253-70. PubMed, CrossRef
- Klotz LO, Hou X, Jacob C. 1,4-Naphthoquinones: from oxidative damage to cellular and inter-cellular signaling. Molecules. 2014 Sep 17;19(9):14902-18. PubMed, CrossRef
- Kumagai Y, Shinkai Y, Miura T, Cho AK. The chemical biology of naphthoquinones and its environmental implications. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2012;52:221-47. Review. PubMed, CrossRef
- Al-Ghorbani M, Bushra Begum A, Zabiulla, Mamatha SV, Khanum Shaukath Ara. Piperazine and morpholine: synthetic preview and pharmaceutical applications. Res J Pharm Technol. 2015;8(5): 611-28. CrossRef
- Bezkorovaynyj AO, Zyn AR, Harasym NP, Len JT, Figurka O M, Sanagursky DI. Effect of 1,4-naphthoquinone amide derivatives on morphological changes in loach embryos and larvae. Studia Biologica. 2015;9(3-4):79-88. (In Ukrainian).
- Zyn AR, Holovchak NP, Tarnovska AV, Galan MB, Sanagursky DI. Effect of sodium hypochlorite on prooxidant and antioxidant homeostasis of loach embryos during early embryogenesis. Studia Biologica. 2012;6(1):67-76. (In Ukrainian).
- Sanagursky DI. Objects of Biophysics: Monograph. Lviv: Publishing Center of Ivan Franko National University of Lviv, 2008. 522 p. (In Ukrainian).
- Lowry OH, Rosenbrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951 Nov;193(1):265-75. PubMed
- Timirbulatov RA, Seleznev EI. Method for increasing the intensity of free radical oxidation of lipid-containing components of the blood and its diagnostic significance. Lab Delo. 1981;(4):209-11. (In Russian). PubMed
- Kostiuk VA, Potapovich AI, Kovaleva ZhV. A simple and sensitive method of determination of superoxide dismutase activity based on the reaction of quercetin oxidation. Vopr Med Khim. 1990 Mar-Apr;36(2):88-91. (In Russian). PubMed
- Korolyuk MA, Ivanova LI, Mayorova IG, Tokarev VE. A method of determining catalase activity. Lab Delo. 1988;(1):16-9. (In Russian). PubMed
- Dubin M, Fernandez Villamil SH, Stoppani AO. Inhibition of microsomal lipid peroxidation and cytochrome P-450-catalyzed reactions by beta-lapachone and related naphthoquinones. Biochem Pharmacol. 1990 Apr 1;39(7):1151-60. PubMed, CrossRef
- Elingold I, Taboas MI, Casanova MB, Galleano M, Silva RS, Menna-Barreto RF, Ventura Pinto A, de Castro SL, Costa LE, Dubin M. Mechanism of action of novel naphthofuranquinones on rat liver microsomal peroxidation. Chem Biol Interact. 2009 Dec 10;182(2-3):213-9. PubMed, CrossRef
- Kargin VI, Motovilov KA, Vyssokikh MYu, Yaguzhinsky LS. Interaction of positively charged ubiquinone analog (MitoQ10) with DT-diaphorase from liver mitochondria. Biol Membr. 2008;25(1):34-40.
- Helmut S. Oxidative Stress. Elsevier. 2013. 507 p.
- Menshchikova E.B, Lankin VZ, Bondar NK, Krugovykh NF, Trufakin VA. Oxidative stress. Prooxidants and antioxidants. M : The company “Word”, 2006. 556 p. (In Russian).
- Ollinger K, Brunmark A. Effect of hydroxy substituent position on 1,4-naphthoquinone toxicity to rat hepatocytes. J Biol Chem. 1991 Nov 15;266(32):21496-503. PubMed
- Pritsos CA, Aaronson LM, Pardini RS. Metabolic consequences of dietary 2,3-dichloro-1,4-naphthoquinone (CNQ) in the rat. Alteration in anti-oxidant enzyme activities. Biochem Pharmacol. 1986 Apr 1;35(7):1131-5. PubMed, CrossRef
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.