Ukr.Biochem.J. 2016; Том 88, № 4, липень-серпень, c. 40-47

doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj88.04.040

Вплив знеболювання омнопоном та декскетопрофеном на функціональний стан імунних клітин мишей на моделі хірургічного видалення пухлини

20.09.2016   Без категорії   No comments

Р. І. Сидор1,2, Н. M. Храновська1, O. В. Скачковa1, Л. М. Сківка2

1Національний інститут раку, Київ, Україна;
2Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Україна;
e-mail: creatogen@gmail.com

Досліджували вплив періопераційного знеболення неселективним інгібітором циклооксигенази-2 декскетопрофеном та опіоїдним аналгетиком омнопоном на функціональну активність імунних клітин мишей на моделі видалення перещепленої пухлини. Карциному легень Льюїс перещеплювали мишам лінії C57/black в задню лапу. На 23-тю добу пухлину видаляли хірургічно. Аналгетики вводили за 30 хв до та раз на добу протягом 3 діб після операції. Забір біологічного матеріалу проводили за добу до, на 1-шу та 3-тю добу після операції. Рівень експресії мРНК IFN-γ, IL-4, IL-10 та TGF-β в спленоцитах визначали методом кількісної ПЛР в режимі реального часу. Цитотоксичну активність спленоцитів оцінювали методом проточної цитометрії. Встановили, що рівень мРНК IL-10 зростав у 2,3 раза на 1-шу добу після операції порівняно із доопераційним рівнем (P < 0,05) в спленоцитах мишей, які отримували опіоїдну аналгезію, тоді як у разі застосування декскетопрофену цей показник майже не змінювався. Рівень експресії мРНК IFN-γ на 3-тю добу після операції був на 40% вищим у спленоцитах мишей, які отримували декскетопрофен порівняно з тими, що отримували омнопон (P < 0,05). Цитотоксична активність спленоцитів на 3-тю добу після операції становила (62,2 ± 2,4)% за застосування декскетопрофену порівняно з (50,2 ± 3,3)% за аналгезії омнопоном. У підсумку, після хірургічного видалення перещепленої пухлини функціональна активність клітин імунної системи мишей є вищою у разі застосування аналгезії декскетопрофеном, ніж за застосування омнопону.

Ключові слова: , , , ,

Посилання:

  1. Das J, Kumar S, Khanna S, Mehta Y. Are we causing the recurrence-impact of perioperative period on long-term cancer prognosis: Review of current evidence and practice. J Anaesthesiol Clin Pharmacol. 2014 Apr;30(2):153-9.   PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  2. Kimura F, Shimizu H, Yoshidome H, Ohtsuka M, Miyazaki M. Immunosuppression following surgical and traumatic injury. Surg Today. 2010 Sep;40(9):793-808. PubMed, CrossRef
  3. Meserve JR, Kaye AD, Prabhakar A, Urman RD. The role of analgesics in cancer propagation. Best Pract Res Clin Anaesthesiol. 2014 Jun;28(2):139-51. PubMed, CrossRef
  4. Kaye AD, Patel N, Bueno FR, Hymel B, Vadivelu N, Kodumudi G, Urman RD. Effect of opiates, anesthetic techniques, and other perioperative factors on surgical cancer patients. Ochsner J. 2014 Summer;14(2):216-28. PubMed, PubMedCentral
  5. Yiannakopoulou E. Targeting epigenetic mechanisms and microRNAs by aspirin and other non steroidal anti-inflammatory agents – implications for cancer treatment and chemoprevention. Cell Oncol (Dordr). 2014 Jun;37(3):167-78.   PubMed, CrossRef
  6. Harris RE. Cyclooxygenase-2 (cox-2) blockade in the chemoprevention of cancers of the colon, breast, prostate, and lung. Inflammopharmacology. 2009 Apr;17(2):55-67. Review. PubMed, CrossRef
  7. Lisowska B, Szymańska M, Nowacka E, Olszewska M. Anesthesiology and the cytokine network. Postepy Hig Med Dosw (Online). 2013 Aug 5;67:761-9. Review. PubMed, CrossRef
  8. Menger MD, Vollmar B. Surgical trauma: hyperinflammation versus immunosuppression? Langenbecks Arch Surg. 2004 Nov;389(6):475-84. Review. PubMed, CrossRef
  9. Van Elssen CH, Vanderlocht J, Oth T, Senden-Gijsbers BL, Germeraad WT, Bos GM. Inflammation-restraining effects of prostaglandin E2 on natural killer-dendritic cell (NK-DC) interaction are imprinted during DC maturation. Blood. 2011 Sep 1;118(9):2473-82. PubMed, CrossRef
  10. Sasamura T, Nakamura S, Iida Y, Fujii H, Murata J, Saiki I, Nojima H, Kuraishi Y. Morphine analgesia suppresses tumor growth and metastasis in a mouse model of cancer pain produced by orthotopic tumor inoculation. Eur J Pharmacol. 2002 Apr 26;441(3):185-91. PubMed, CrossRef
  11. Ninković J, Roy S. Role of the mu-opioid receptor in opioid modulation of immune function. Amino Acids. 2013 Jul;45(1):9-24. Review. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  12. Jiang J, Dingledine R. Prostaglandin receptor EP2 in the crosshairs of anti-inflammation, anti-cancer, and neuroprotection. Trends Pharmacol Sci. 2013 Jul;34(7):413-23. Review. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  13. Gu AD, Zhang S, Wang Y, Xiong H, Curtis TA, Wan YY. A critical role for transcription factor Smad4 in T cell function that is independent of transforming growth factor β receptor signaling.  Immunity. 2015 Jan 20;42(1):68-79.  PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  14. Lantero A, Tramullas M, Díaz A, Hurlé MA. Transforming growth factor-β in normal nociceptive processing and pathological pain models. Mol Neurobiol. 2012 Feb;45(1):76-86. PubMed, CrossRef
  15. Ronaldson PT, Finch JD, Demarco KM, Quigley CE, Davis TP. Inflammatory pain signals an increase in functional expression of organic anion transporting polypeptide 1a4 at the blood-brain barrier. J Pharmacol Exp Ther. 2011 Mar;336(3):827-39. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  16. Pacifici R, di Carlo S, Bacosi A, Pichini S, Zuccaro P. Pharmacokinetics and cytokine production in heroin and morphine-treated mice. Int J Immunopharmacol. 2000 Aug;22(8):603-14. PubMed, CrossRef
  17. Edwards JP, Emens LA. The multikinase inhibitor sorafenib reverses the suppression of IL-12 and enhancement of IL-10 by PGE₂ in murine macrophages. Int Immunopharmacol. 2010 Oct;10(10):1220-8.  PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  18. Gutkin DW, Shurin MR. Clinical evaluation of systemic and local immune responses in cancer: time for integration. Cancer Immunol Immunother. 2014 Jan;63(1):45-57. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  19. Forget P, De Kock M. Could anaesthesia, analgesia and sympathetic modulation affect neoplasic recurrence after surgery? A systematic review centred over the modulation of natural killer cells activity. Ann Fr Anesth Reanim. 2009 Sep;28(9):751-68. PubMed, CrossRef
  20. Walker W, Rotondo D. Prostaglandin E2 is a potent regulator of interleukin-12- and interleukin-18-induced natural killer cell interferon-gamma synthesis. Immunology. 2004 Mar;111(3):298-305. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  21. Yakar I, Melamed R, Shakhar G, Shakhar K, Rosenne E, Abudarham N, Page GG, Ben-Eliyahu S. Prostaglandin e(2) suppresses NK activity in vivo and promotes postoperative tumor metastasis in rats. Ann Surg Oncol. 2003 May;10(4):469-79. PubMed, CrossRef
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.