Ukr.Biochem.J. 2025; Том 97, № 4, липень-серпень, c. 94-101

doi: https://doi.org/10.15407/ubj97.04.094

Вплив ліпополісахаридів Escherichia coli на активність протеаз ряду штамів Bacillus

14.04.2026   Uncategorized

Л. Д. Варбанець1, О. С. Броварська1, О. В. Гудзенко1*,
К. Г. Гаркава2, А. Р. Макаренко2

1Інститут мікробіології і вірусології ім. Д.К. Заболотного НАН України, Київ
2Національний технічний університет України
«Київський політехнічний інститут ім. Ігоря Сикорського», Київ;
*e-mail: alena.gudzenko81@gmail.com

Отримано: 07 липня 2025; Виправлено: 23 серпня 2025;
Затверджено: 12 вересня 2025; Доступно онлайн: 17 вересня 2025

Раніше нами було показано, що ліпополісахариди (ЛПС) ряду штамів фітопатогенного виду Pantoea agglomerans здатні в 2-4 рази підвищувати активність пептидаз Bacillus з фібринолітичною, еластазною та колагеназною активностями. Метою даної роботи було дослідити вплив внутрішньоклітинного ЛПС1 та позаклітинного ЛПС2 Escherichia coli на активність очищених протеаз бацил з еластазною та фібриногенолітичною активністю. Показано, що як ЛПС2, так і ЛПС1 E. coli 23 можуть підвищувати еластазну активність Bacillus sp. IMV B-7883 на 600 та 416% відповідно. Обидва ЛПС здатні підвищувати фібриногенолітичну активність всіх досліджених штамах Bacillus, але найбільша її стимуляція (200%) спостерігалася під дією ЛПС2 Bacillus sp. L9.

Ключові слова: , ,

Посилання:

  1.  Raetz CR, Whitfield C. Lipopolysaccharide endotoxins. Annu Rev Biochem. 2002:71:635-700. PubMed, PubMed, CrossRef
  2.  Poltorak A, He X, Smirnova I, Liu MY, Van Huffel C, Du X, Birdwell D, Alejos E, Silva M, Galanos C, Freudenberg M, Ricciardi-Castagnoli P, Layton B, Beutler B. Defective LPS signaling in C3H/HeJ and C57BL/10ScCr mice: mutations in Tlr4 gene. Science. 1998;282(5396):2085-2088. PubMed, cr id=”https://doi.org/10.1126/science.282.5396.2085″]
  3.  Lemaitre B, Nicolas E, Michaut L, Reichhart JM, Hoffmann JA. The dorsoventral regulatory gene cassette spätzle/Toll/cactus controls the potent antifungal response in Drosophila adults. Cell. 1996;86(6):973-983. PubMed, CrossRef
  4.  Farhana A, Khan YS. Biochemistry, Lipopolysaccharide. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; April 17, 2023.
  5.  Kramer RA, Brandenburg K, Vandeputte-Rutten L, Werkhoven M, Gros P, Dekker N, Egmond MR. Lipopolysaccharide regions involved in the activation of Escherichia coli outer membrane protease OmpT. Eur J Biochem. 2002;269(6):1746-1752. PubMed, CrossRef
  6. Dzyublyuk NA, Varbanets LD, Bulyhina TV. Influence of Pantoea agglomerans lipopolisaccharides on the activity of Bacillus proteases. Microbiol Zh. 2018;80(1):27-35. (In Ukrainian). CrossRef
  7. Varbanets LD, Brovarskaya ОS, Garkava KG, Tymoshenko UV. Characteristics of Escherichia coli K Lipopolysacharide. Mikrobiol Zh. 2024;86(6):20-29. CrossRef
  8. Gudzenko OV, Varbanets LD, Butsenko LM, Pasichnyk LA, Chernyshenko VO, Stogniy EM. Strain Bacillus sp. IMV B-7883 – producer of extracellular proteinase with fibrinogenolytic activity. Utility patent No. 145577. Registered in the State Register of Patents of Ukraine for Utility Models. 28.12. 2020.
  9. Gudzenko OV, Varbanets LD. Screening of protease producers among representatives of the genus Bacillus isolated from the coastal zone of the Kinburn split. Microbiol Zh. 2024;86(2):3-9. CrossRef
  10. Ivanytsia VO, Shtenikov MD, Ostapchuk AM. Facultatively-anaerobic endosporeforming bacteria of deep water bottom sediments of Black Sea. Microbiol Biotechnol. 2017;(4):94-103.
  11. Westphal O, Jann K.Bacterial lipopolysaccharides extraction with phenol-water and further applications of the procedure. Methods Carbohydr Chem. 1965;5:83-91.
  12. Chaby R, Charon D, Caroff M, Sarfati SR, Trigalo F. Estimation of 3-deoxy-D-manno-2- octulosonic acid in lipopolysaccharides: an unsolved problem. In: Methods in Carbohydrate Chemistry. Ed. by BeMiller JN, Whistler RL, Shaw DH. NeW York: John Wiley J. & Sons. Inc, 1993;9: 33-46.
  13. Dische Z. Qualitative and quantitative colorimetric determination of heptoses. J Biol Chem. 1953;204(2):983-997. PubMed, CrossRef
  14. Dubois M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PA, Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal Chem. 1956;28(3);350-356. CrossRef
  15. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193(1):265-275. PubMed, CrossRef
  16. Spirin AS. Spectrophotometric determination of total nucleic acids. Biokhimiia. 1958;23(5):656-662. (In Russian). PubMed
  17. Albersheim P, Nevins DJ, English PD, Karr A. A method for the analysis of sugars in plant cell-wall polysaccharides by gas-liquid chromatography. Carbohydr Res. 1967;5(3):340-345. CrossRef
  18. Ouchterlony О. Diffusion-In-Gel Methods for Immunological Analysis II (Part 4 of 4). Chem Immunol Allergy. 1962:126-154. CrossRef
  19. Varbanets LD, Matseliukh EV. Peptidases of microorganisms and methods of their investigations. Kyiv, Naukova Dumka, 2014. 323 p.
  20. Masada M. Determination of the thrombolytic activity of Natto extract. Food style. 2004; 8 (1): 92-95.
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.