Ukr.Biochem.J. 2016; Том 88, № 1, січень-лютий, c. 22-30

doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj88.01.022

Різні параметричні підходи з метою оцінювання гострого променевого ураження легенів у щурів

01.04.2016   Без категорії   No comments

Sandeep Soni1, Mitra Basu2, Priyanka Agrawal2,
Neeraj Kumar2, Aseem Bhatnagar2, Neelam Chhillar1

1Institute of Human Behaviour and Allied Sciences, Dilshad Garden, India;
e-mail: nlmchhillar@yahoo.co.in;
2Institute of Nuclear Medicine and Allied Sciences (INMAS),
Defence Research & Development Organization (DRDO), Delhi, India

Вивчали ефект одноразового загального γ-опромінення і його вплив на секрецію різних клітинних компонентів, які можуть бути використані як біохімічні маркери пошкодження легенів з метою оцінювання гострого променевого ураження легенів. Дослідження проводили на щурах, яких опромінювали в дозі від 1 до 5 Гр (зі швидкістю – 0,95 Гр/хв). Бронхоальвеолярний лаваж (БАЛ) отримували від тварин контрольної та дослідних груп (впродовж 72 год після опромінення). У рідинах БАЛ аналізували активність лактатдегідрогенази (ЛД), кислої фосфатази (КФ), лужної фосфатази (ЛФ), також робили підрахунок клітин і вимірювали загальний вміст протеїну. Внутрішньогрупове і міжгрупове порівняння параметрів БАЛ за різних доз опромінення продемонструвало значну відмінність. Так, активність ЛД в інтервалі опромінення від 1 до 5 Гр (Р = 0,00) значно збільшувалась після 2 год опромінення з різницею r > 0,3. Активність ЛФ значно змінилась після опромінення дозами 3 і 4 Гр (Р < 0,05), тоді як КФ – в інтервалі 2–5 Гр (Р < 0,05). Загальний вміст протеїну також істотно змінився в досліджуваному інтервалі опромінення (Р < 0,00). Таким чином, дослідження БАЛ щурів після одноразового γ-опромінення показало, що ЛД, КФ, ЛФ, нейтрофіли, лімфоцити, загальна кількість лейкоцитів і загальний вміст протеїну чутливі до пошкоджуючого опромінювання і біохімічні показники їх істотно змінюються впродовж 72 год дослідження. Дійшли висновку, що біохімічні показники БАЛ можуть мати більш широке застосування у разі оцінки гострого ураження легенів за індукованого опромінення.

Ключові слова: , ,

Посилання:

  1. Ramesh AC, Kumar S. Triage, monitoring, and treatment of mass casualty events involving chemical, biological, radiological, or nuclear agents. J Pharm Bioallied Sci. 2010 Jul;2(3):239-47. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  2. Rea ME, Gougelet RM, Nicolalde RJ, Geiling JA, Swartz HM. Proposed triage categories for large-scale radiation incidents using high-accuracy biodosimetry methods. Health Phys. 2010 Feb;98(2):136-44. PubMed, CrossRef
  3. Blakely WF, Salter CA, Prasanna PGS. Early-response biological dosimetry–recommended countermeasure enhancements for mass-casualty radiological incidents and terrorism. Health Phys. 2005 Nov;89(5):494-504. PubMed, CrossRef
  4. Takavar A., Minaei B., Hadadi G. H., Khoei S., Refahi S., Behrouzkia Z., Pourissa M., Ghamami G. Late histopathological findings in the thoracic irradiation: A preliminary study in the animal model. Life Sci. J. 2013; 10(7s): 583-585.
  5. Stone HB, Coleman CN, Anscher MS, McBride WH. Effects of radiation on normal tissue: consequences and mechanisms. Lancet Oncol. 2003 Sep;4(9):529-36. Review.
    PubMed, CrossRef
  6. Mansoub NH. Influence of Cobalt(60) radiation on the Rat Lung. Ann Biol Res. 2011;2(5):563-566.
  7. Ataya S, Elwing J, Biddinger P, Panos RJ.  Radiation-Induced Lung Injury. Clin Pulm Med. 2006; 13(4): 232-242. CrossRef
  8. King TE. The handling and analysis of broncho-alveolar lavage specimens. Mosby Book, St. Louis, Mo 1992.
  9. Henderson RF. Analysis of respiratory tract lining fluids to detect injury. CRC Press Inc. 1991.
  10. Linder J, Rennard SI. Broncho-alveolar lavage. American Society of Clinical Pathologists Press. Chicago; 1988.
  11. Henderson RF, Scott GG, Waide JJ. Source of alkaline phosphatase activity in epithelial lining fluid of normal and injured F344 rat lungs. Toxicol Appl Pharmacol. 1995 Sep;134(1):170-4. PubMed, CrossRef
  12. Revised guide for the care and use of laboratory animals. NIH guide. 1996; 25(28).
  13. Henderson RF, Benson JM, Hahn FF, Hobbs CH, Jones RK, Mauderly JL, McClellan RO, Pickrell JA. New approaches for the evaluation of pulmonary toxicity: bronchoalveolar lavage fluid analysis. Fundam Appl Toxicol. 1985 Jun;5(3):451-8. PubMed,  CrossRef
  14. Sole PD, Pagliari G, Napolitano M, Frigeri L, Delia C, Anna M, Marzo AD, Valentini S, D‘Onofrio G. Cell count in bronchoalveolar lavage fluid: comparison between counting chamber and two automatic cell counters. J Bronchology Interv Pulmonol.  1996 Jul; 3(3): 192-195. CrossRef
  15. Reynolds HY. Use of bronchoalveolar lavage in humans–past necessity and future imperative. Lung. 2000;178(5):271-93. Review. PubMed, CrossRef
  16. Costabel U, Guzman J. Bronchoalveolar lavage in interstitial lung disease. Curr Opin Pulm Med. 2001 Sep;7(5):255-61. Review. PubMed, CrossRef
  17. Chen Y, Williams J, Ding I, Hernady E, Liu W, Smudzin T, Finkelstein JN, Rubin P, Okunieff P. Radiation pneumonitis and early circulatory cytokine markers. Semin Radiat Oncol. 2002 Jan;12(1 Suppl 1):26-33. PubMed, CrossRef
  18. Hong JH, Jung SM, Tsao TC, Wu CJ, Lee CY, Chen FH, Hsu CH, McBride WH, Chiang CS. Bronchoalveolar lavage and interstitial cells have different roles in radiation-induced lung injury. Int J Radiat Biol. 2003 Mar;79(3):159-67. PubMed, CrossRef
  19. Park KJ, Oh YT, Kil WJ, Park W, Kang SH, Chun M. Bronchoalveolar lavage findings of radiation induced lung damage in rats. J Radiat Res. 2009 May;50(3):177-82. PubMed, CrossRef
  20. Nakayama Y, Makino S, Fukuda Y, Min KY, Shimizu A, Ohsawa N. Activation of lavage lymphocytes in lung injuries caused by radiotherapy for lung cancer. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1996 Jan 15;34(2):459-67. PubMed, CrossRef
  21. von Vietinghoff S, Ley K. Homeostatic regulation of blood neutrophil counts. J Immunol. 2008 Oct 15;181(8):5183-8. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  22. Sadik CD, Kim ND, Luster AD. Neutrophils cascading their way to inflammation. Trends Immunol. 2011 Oct;32(10):452-60. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  23. Yi ES, Bedoya A, Lee H, Chin E, Saunders W, Kim SJ, Danielpour D, Remick DG, Yin S, Ulich TR. Radiation-induced lung injury in vivo: expression of transforming growth factor-beta precedes fibrosis. Inflammation. 1996 Aug;20(4):339-52. PubMed, CrossRef
  24. Henderson RF. Use of bronchoalveolar lavage to detect lung damage. Environ Health Perspect. 1984 Jun;56:115-29. PubMed,  PubMedCentral, CrossRef
  25. Salovsky P, Shopova V, Dancheva V, Marev R, Pandurska A. Enhancement of the pneumotoxic effect of cadmium acetate by ionizing radiation in the rat. Environ Health Perspect. 1993 Jul;101(Suppl 2):269-74. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  26. Kleyklamp BO, Baughman RP. Who should perform bronchoalveolar lavage analysis? Am J Respir Crit Care Med. 1998; 157: 167.
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.