Ukr.Biochem.J. 2017; Том 89, № 4, липень-серпень, c. 49-55

doi: https://doi.org/10.15407/ubj89.04.049

Експериментальне дослідження фібринолітичної системи під впливом флокаліну за гострого гіпоксичного пошкодження нирок

08.11.2017   Без категорії   No comments

А. І. Гоженко1, Ю. І. Губський2, Н. Д. Філіпець3, О. О. Філіпець3, О. А. Гоженко1

1ДП «Український науково-дослідний інститут медицини транспорту», Одеса;
2ДУ «Інститут фармакології та токсикології НАМН України», Київ;
3ВДНЗ України «Буковинський державний медичний університет», Чернівці;
е-mail: filipec.natalja@bsmu.edu.ua

В експериментах на щурах із гострою гіпоксичною гістогемічною нефропатією (ГГГН), зумовленою нітритом натрію та 2,4-динітрофенолом, вивчали стан фібринолітичної активності плазми крові, сечі, коркової, мозкової речовини та сосочку нирок під впливом активації K+АТР каналів флокаліном (5 мг/кг, внутрішньошлунково, 7 днів). Показано, що за розвитку ГГГН після введення флокаліну відбувалося підвищення та відновлення пригніченої гіпоксією фібринолітичної активності завдяки активації неензиматичного фібринолізу в плазмі крові, тоді як у сечі та в мозковій речовині нирок істотно збільшувалась ензиматична фібринолітична активність. Встановлена і статистично підтверджена позитивна динаміка показників іонорегулювальної функції нирок і екскреції протеїну вказують на захисний вплив активації K+АТР каналів на один із біохімічних механізмів патогенезу гострого гіпоксичного пошкодження нирок і протекторної дії флокаліну в канальцевому відділі нефрону.

Ключові слова: , ,

Посилання:

  1. Noma A. ATP-regulated K+ channels in cardiac muscle. Nature. 1983 Sep 8-14;305(5930):147-8. PubMed, CrossRef
  2. Moybenko OO, Strutynskyi RB, Yagupolskii LM, Mohort MA, Shalamai AS. Organization of industrial production of flokalin – new myotropic spasmolytic and cardioprotector. Sci Innov. 2009;5(1):80-84. (In Ukrainian). CrossRef
  3. Gozhenko A. I., Filipets N. D. Тhe renotropic effects of adenosine triphosphate-sensitive potassium channel activation depending on the functional state of kidneys in rats. Nephrology. 2013;17(2):87-90. (In Russian).
  4. Chernukha LM, Kashyrova OV, Lugovskoy EV, Komisarenko SV, Kolesnikova IN, Makohonenko YeM, Platonova TN, Pirogova LV, Gornickaya OV. Сlinical features of the state of hemostasis system at arteriovenous forms of congenital vascular malformations. Heart Vessels. 2015;2:65-73.
  5. Borys RM, Sirman VM, Nykytenko OP, Zukow W, Gozhenko AI. Description of dynamics change hemostasis, proteolysis, fibrinolysis and lipid peroxidation in kidney tissue. J Educ Health Sport. 2016;6(3):241-258.
  6. Lutz J, Menke J, Sollinger D, Schinzel H, Thürmel K. Haemostasis in chronic kidney disease. Nephrol Dial Transplant. 2014 Jan;29(1):29-40. PubMed, CrossRef
  7. Mahendran KB, Bhaskar MV, Santha K, Inmozhi R, Perumal KK. Plasma and Urinary Type IV Collagen Levels for Early Detection of Nephropathy in Type 2 Diabetes Mellitus Patients. Int J Health Sci (Qassim). 2016 Oct;10(4):492-498. PubMed, PubMedCentral
  8. Ribic C, Crowther M. Thrombosis and anticoagulation in the setting of renal or liver disease. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2016 Dec 2;2016(1):188-195. PubMed, CrossRef
  9. Gozhenko AI, Kravchuk AV, Nikitenko OP, Moskolenko OM, Sirman VM. Functional Renal Reserve. Оdessa: Foenix; 2015. 180 p. (In Ukrainian).
  10. Pat. 90547 UA, IСP (2014.01) A61В 17/00. Method of Modeling Hypoxic Nephropathy / Filipets N. D., Davydenko I. S., Pashkovskyi V. M., Filipets О. О., Gozhenko A. I. Publ. 26.05.2014; Bul. N 10. (In Ukrainian).
  11. Strutynskyi RB, Moybenko OO, Chebanov VA, Gorobets NYu. Modeling of production industrial process of the drug flocalin and search of its optimally effective dose for treatment of heart diseases. Sci Innov. 2013;9(1):55-63. (In Ukrainian). CrossRef
  12. Berchin EB, Ivanov YuI. Methods of experimental study of kidneys and water-salt metabolism. Barnaul: The Altai Book Publishing house, 1972. 199 p. (Іn Russian).
  13. Mikheeva AI, Bogodarova IA. Sulphosalicylic method for determination of urine protein. Lab Delo. 1969;7:441-442. (Іn Russian).
  14. Mahalyas VM, Mikhyev AO, Rohovyy YuYe. Modern methods of experimental and clinical studies of the central research laboratory of Bukovyna State Medical Academy. Chernivtsi: BSMA, 2001. 42 p. (In Ukrainian).
  15. Akopova O, Nosar V, Gavenauskas B, Bratus L, Kolchinskaya L, Mankovska I, Sagach V. The effect of atp-dependent potassium uptake on mitochondrial functions under acute hypoxia. J Bioenerg Biomembr. 2016 Feb;48(1):67-75.  PubMed, CrossRef
  16. Baraldi O, Valentini C, Donati G, Comai G, Cuna V, Capelli I, Angelini ML, Moretti MI, Angeletti A, Piscaglia F, La Manna G. Hepatorenal syndrome: Update on diagnosis and treatment. World J Nephrol. 2015 Nov 6;4(5):511-20.  PubMed, PubMedCentral
  17. Lugovskoy E. V, Makogenenko E. M., Komysarenko S. V. Molecular mechanisms of fibrin formation and destruction. К.: Nauk. Dumka, 2013. 229 p. (In Ukrainian).
  18. Tkachuk VA, Plekhanova OS, Beloglazova IB, Parfenova EV. Role of multidomain structure of urokinase in regulation of growth and remodeling of vessels. Uкr Bіоkhim Zhurn. 2013;85(6):18-45. (Іn Ukrainian).  CrossRef
  19. Gozhenko АІ, Filipets ND. The influence of focalin on the biochemical markers of acute hypoxic histohemic nephropathy. 14th Reading of V.V. Podvysotskyi: sci.-pract. conference with international participation; 2015 May 27-28; Оdеssа, 2015. 55-56. (In Ukrainian).
  20. Yagupolskii LM, Petko KI, Tarasova YeV. Fluorine-containing potassium chanels activators – flokalin and it’s analogs. J Org Pharmac Chem. 2004; 2(4): 11-16. (In Ukrainian).
  21. Voitychuk OI, Moybenko EA, Shuba YM. ATP-dependent potassium channel opener flocalin regulates cardiac excitablity. Fiziol Zh. 2010;56(1):41-53. (In Ukrainian).
  22. Strutynska NA , Strutynskyi RB, Chorna SV, Semenykhina OM, Mys LA, Moibenko OO, Sagach VF. New fluorine-containing openersof ATP-sensitive potassium channels flokalin and tioflokalin inhibitcalcium-induced mitochondrial pore opening in rat hearts. Fiziol Zh. 2013;59(6):3-11. (In Ukrainian). PubMed
  23. Voitychuk OI, Srutynskyi RB, Shuba YM. Effects of ATP-dependent potassium channel activator flocalin include sodium and calcium channels inhibition in cardiomyocytes. Biophysical J. 2011;100(3):433a.  CrossRef
  24. Filipets ND, Gozhenko AI. Сomparative assessment of nephroprotective properties of potassium and calcium channel modulators in experimental renal injury. Exp Clin Pharmacol. 2014;77(1):10-12. (In Russian). PubMed
  25. Robles NR, Calvo C, Sobrino J, Espinel E, Esteban R, Mateos L, Macias JF. Lercanidipine valuable effect on urine protein losses: the RED LEVEL study. Curr Med Res Opin. 2016 Oct;32(sup2):29-34. PubMed, CrossRef
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.