Ukr.Biochem.J. 2023; Том 95, № 2, березень-квітень, c. 68-74

doi: https://doi.org/10.15407/ubj95.02.068

Вплив L-глутамінової кислоти і N-ацетилцистеїну на біохімічні показники крові у щурів, які отримували CCl(4)

14.07.2023   Uncategorized   No comments

Н. О. Салига

Інститут біології тварин НААН України, Львів;
е-mail: ynosyt@yahoo.com

Отримано: 30 березня 2022; Виправлено: 19 травня 2023;
Затверджено: 05 червня 2023; Доступно онлайн: 20 червня 2023

Токсична органічна речовина CCl4 є добре відомою модельною сполукою для вивчення детоксикаційної функції печінки та розвитку оксидативного стресу. Метою дослідження було оцінити вплив введення L-глутамінової кислоти (L-Glu) і N-ацетилцистеїну (NAC) на параметри крові щурів за токсичної дії CCl4. Піддослідним самцям щурам Вістар внутрішньоочеревинно вводили CCl4, щурам групи CCl4/L Glu додатково вводили L-Glu (750 мг/кг), щури групи CCl4/NAC отримували NAC (150 мг/кг), а група CCl4/L-Glu/NAC – L-Glu (750 мг/кг) і NAC (150 мг/кг). Тривалість експерименту становила 24 год. У крові тварин, які отримували CCl4, спостерігали підвищений рівень пероксидів ліпідів, TBARS, триацилгліцеринів, холестерину та зниження активності глутатіонпероксидази, глутатіонредуктази, глутатіон-S-трансферази та вмісту GSH порівняно з контрольною групою без лікування. Показано, що після додаткового введення тваринам L-Glu або L-Glu/NAC, більшість досліджуваних показників була близька до контрольного рівня. Ці результати свідчать про те, що вищезазначені амінокислоти послаблювали CCl4-індукований оксидативний стрес у крові щурів.

Ключові слова: , , , , ,

Посилання:

  1. Ernst L, Zieglowski L, Schulz M, Moss M, Meyer M, Weiskirchen R, Palme R, Hamann M, Talbot SR, Tolba RH. Severity assessment in mice subjected to carbon tetrachloride. Sci Rep. 2020;10(1):15790. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  2. Li R, Zhang P, Li C, Yang W, Yin Y, Tao K. Tert-butylhydroquinone mitigates Carbon Tetrachloride induced Hepatic Injury in mice. Int J Med Sci. 2020;17(14):2095-2103. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  3. Scholten D, Trebicka J, Liedtke C, Weiskirchen R. The carbon tetrachloride model in mice. Lab Anim. 2015;49(1 Suppl):4-11. PubMed, CrossRef
  4. Hamed H, Gargouri M, Bellassoued K, Ghannoudi Z, Elfeki A, Gargouri A. Cardiopreventive effects of camel milk against carbon tetrachloride induced oxidative stress, biochemical and histological alterations in mice. Arch Physiol Biochem. 2018;124(3):253-260. PubMed, CrossRef
  5. Pergel A, Tümkaya L, Çolakoğlu MK, Demiral G, Kalcan S, Özdemir A, Mercantepe T, Yilmaz A. Effects of infliximab against carbon tetrachloride-induced intestinal injury via lipid peroxidation and apoptosis. Hum Exp Toxicol. 2019;38(11):1275-1282. PubMed, CrossRef
  6. Lobo V, Patil A, Phatak A, Chandra N. Free radicals, antioxidants and functional foods: Impact on human health. Pharmacogn Rev. 2010;4(8):118-126. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  7. Aruoma OI. Nutrition and health aspects of free radicals and antioxidants. Food Chem Toxicol. 1994;32(7):671-683. PubMed, CrossRef
  8. Mutus B. The catalytic mechanism for NO production by the mitochondrial enzyme, sulfite oxidase. Biochem J. 2019;476(13):1955-1956. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  9. Cynober L. Metabolism of Dietary Glutamate in Adults. Ann Nutr Metab. 2018;73(Suppl 5):5-14. PubMed, CrossRef
  10. Salyha NO. L-glutamic acid effect on changes in biochemical parameters of rats intoxicated by carbon tetrachloride. Biol Tvarin. 2021;23(1):18-22. CrossRef
  11. Michlin M, Argaev-Frenkel L, Weinstein-Fudim L, Ornoy A, Rosenzweig T. Maternal N-Acetyl Cysteine Intake Improved Glucose Tolerance in Obese Mice Offspring. Int J Mol Sci. 2020;21(6):1981. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  12. Mahmoud SM, Abdel Moneim AE, Qayed MM, El-Yamany NA. Potential role of N-acetylcysteine on chlorpyrifos-induced neurotoxicity in rats. Environ Sci Pollut Res Int. 2019;26(20):20731-20741. PubMed, CrossRef
  13. Liu Y, Yao W, Xu J, Qiu Y, Cao F, Li S, Yang S, Yang H, Wu Z, Hou Y. The anti-inflammatory effects of acetaminophen and N-acetylcysteine through suppression of the NLRP3 inflammasome pathway in LPS-challenged piglet mononuclear phagocytes. Innate Immun. 2015;21(6):587-597. PubMed, CrossRef
  14. Lee SI, Kang KS. N-acetylcysteine modulates lipopolysaccharide-induced intestinal dysfunction. Sci Rep. 2019;9(1):1004. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  15. Salyha NO. Activity of the glutathione system of antioxidant defense in rats under the action of L-glutamic acid. Ukr Biokhim Zhurn. 2013;85(4):40-47. (In Ukrainian). PubMed, CrossRef
  16. Rosalovsky VP, Grabovska SV, Salyha YuT. Changes in glutathione system and lipid peroxidation in rat blood during the first hour after chlorpyrifos exposure. Ukr Biochem J. 2015;87(5):124-132. PubMed, CrossRef
  17. Li R, Huang C, Ho JCH, Leung CCT, Kong RYC, Li Y, Liang X, Lai KP, Tse WKF. The use of glutathione to reduce oxidative stress status and its potential for modifying the extracellular matrix organization in cleft lip. Free Radic Biol Med. 2021;164:130-138. PubMed, CrossRef
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.