Ukr.Biochem.J. 2015; Том 87, № 4, липень-серпень, c. 70-77

doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj87.04.070

Редоксчутливі транскрипційні фактори EGR-1 та SP1 у патогенезі експериментальної виразки шлунка

С. М. Береговий1, Т. М. Червінська1, А. С. Драницина1, Ш. Сабо2, Г. М. Толстанова1

1ННЦ «Інститут біології», Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Україна;
2Каліфорнійський університет, Ірвайн, США;
е-mail: gtolstanova@gmail.com

Зміни редокс-статусу клітин слизової оболонки шлунка є основними чинниками розвитку ерозивно-виразкових уражень в ньому. Про-оксиданти здатні впливати на транскрипційний апарат клітини, змінюючи активність редоксчутливих транскрипційних факторів. Враховуючи той факт, що Egr-1 та Sp-1 регулюють транскрипцію генів, асоційованих із патогенезом виразкової хвороби шлунка (фактори росту, регулятори клітинного циклу тощо), метою цієї роботи була перевірка їх участі в механізмах розвитку уражень шлунка, що спричинені стресом та аспірином. Дослідження проведені на щурах-самцях (180–220 г). Виразки шлунка моделювали водно-іммобілізаційним стресом (ВІ-стрес) чи введенням аспірину (10 мг/100 г). Тварин умертвляли через 20 хв, 1 та 3 год. Експресію генів визначали методами Вестерн-блот аналізу та ПЛР зі зворотною транскрипцією; рівень SH-груп – за методом Еллмана. Встановлено, що поступове збільшення площі ерозивно-виразкових уражень шлунка асоціювалось зі зменшенням у 2 рази (Р < 0,05) рівня SH-груп протеїнів у слизовій оболонці шлунка щурів. Ці зміни спричиняли вірогідне підвищення експресії протеїну та мРНК Egr-1 на обох моделях виразок, причому виразніше за дії ВІ-стресу. Підвищення рівня Egr-1 супроводжувалось паралельним зниженням рівня Sp1. Вперше встановлено, що редоксчутливі транскрипційні фактори Egr‑1 та Sp1 вступають в конкурентну взаємодію на ранніх етапах утворення виразок шлунка, що може сприяти збільшенню індуцибельної транскрипційної активності Egr-1 за рахунок зменшення Sp1 транскрипційної активності.

Ключові слова: , , , , ,


Посилання:

  1. Larichev AB, Maiorov MI, Favstov SV, Shalop’ev AG. Clinical-epidemiological aspects of gastric and duodenum ulcer. Vestnik Khirurgii im. I. I. Grekova. 2014;173(2):100-4. Russian. PubMed
  2. Ramakrishnan K, Salinas RC. Peptic ulcer disease. Am Fam Physician. 2007 Oct 1;76(7):1005-12. Review. PubMed
  3. Laine L, Takeuchi K, Tarnawski A. Gastric mucosal defense and cytoprotection: bench to bedside. Gastroenterology. 2008 Jul;135(1):41-60. Review. PubMed, PubMed
  4. Dvorshchenko C., Vakal S., Beregovyi S. Lipid peroxidation in rat gastric mucosa subcellular fraction under experimental ulcer. Visnyk Kyiv Nat T. Shev. Univ. Probl. Regul. Physiol. Function. 2010;(13):4-5. (In Ukrainian).
  5. Kwiecień S, Brzozowski T, Konturek PCh, Konturek SJ. The role of reactive oxygen species in action of nitric oxide-donors on stress-induced gastric mucosal lesions. J Physiol Pharmacol. 2002 Dec;53(4 Pt 2):761-73. PubMed
  6. Marinho HS, Real C, Cyrne L, Soares H, Antunes F. Hydrogen peroxide sensing, signaling and regulation of transcription factors. Redox Biol. 2014 Feb 23;2:535-62. eCollection 2014. Review. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  7. Thiel G, Cibelli G. Regulation of life and death by the zinc finger transcription factor Egr-1. J Cell Physiol. 2002 Dec;193(3):287-92. Review. PubMed, CrossRef
  8. Sukhatme VP, Cao X, Chang LC, Tsai-Morris CH, Stamenkovich D, Ferreira PC, Cohen DR, Edwards SA, Shows TB, Curran T, Le Beau MM, Adamson ED. A zinc finger-encoding gene coregulated with c-fos during growth and differentiation, and after cellular depolarization. Cell. 1988 Apr 8;53(1):37-43. PubMed, CrossRef
  9. ENCODE Project Consortium. The ENCODE (ENCyclopedia Of DNA Elements) Project. Science. 2004 Oct 22;306(5696):636-40. PubMed, CrossRef
  10. Kerpedjieva SS, Kim DS, Barbeau DJ, Tamama K. EGFR ligands drive multipotential stromal cells to produce multiple growth factors and cytokines via early growth response-1. Stem Cells Dev. 2012 Sep 1;21(13):2541-51. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  11. Szabo S, Deng X, Khomenko T, Chen L, Tolstanova G, Osapay K, Sandor Z, Xiong X. New molecular mechanisms of duodenal ulceration. Ann N Y Acad Sci. 2007 Oct;1113(1):238-55. Review. PubMed, CrossRef
  12. Silverman ES, Collins T. Pathways of Egr-1-mediated gene transcription in vascular biology. Am J Pathol. 1999 Mar;154(3):665-70. Review. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  13. Minc E, de Coppet P, Masson P, Thiery L, Dutertre S, Amor-Guéret M, Jaulin C. The human copper-zinc superoxide dismutase gene (SOD1) proximal promoter is regulated by Sp1, Egr-1, and WT1 via non-canonical binding sites. J Biol Chem. 1999 Jan 1;274(1):503-9. PubMed, CrossRef
  14. Briggs MR, Kadonaga JT, Bell SP, Tjian R. Purification and biochemical characterization of the promoter-specific transcription factor, Sp1. Science. 1986 Oct 3;234(4772):47-52. PubMed, CrossRef
  15. Ryu H, Lee J, Zaman K, Kubilis J, Ferrante RJ, Ross BD, Neve R, Ratan RR. Sp1 and Sp3 are oxidative stress-inducible, antideath transcription factors in cortical neurons. J Neurosci. 2003 May 1;23(9):3597-606. PubMed
  16. Santiago FS, Ishii H, Shafi S, Khurana R, Kanellakis P, Bhindi R, Ramirez MJ, Bobik A, Martin JF, Chesterman CN, Zachary IC, Khachigian LM. Yin Yang-1 inhibits vascular smooth muscle cell growth and intimal thickening by repressing p21WAF1/Cip1 transcription and p21WAF1/Cip1-Cdk4-cyclin D1 assembly. Circ Res. 2007 Jul 20;101(2):146-55. PubMed, CrossRef
  17. Ellman GL. Tissue sulfhydryl groups. Arch Biochem Biophys. 1959 May;82(1):70-7. PubMed, CrossRef
  18. Khomenko T, Szabo S, Deng X, Jadus MR, Ishikawa H, Osapay K, Sandor Z, Chen L. Suppression of early growth response factor-1 with egr-1 antisense oligodeoxynucleotide aggravates experimental duodenal ulcers. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2006 Jun;290(6):G1211-8. PubMed, CrossRef
  19. Liu M, Wang X, Peng Y, Shen S, Li G. Egr-1 regulates the transcription of NGX6 gene through a Sp1/Egr-1 overlapping site in the promoter. BMC Mol Biol. 2014 Jul 16;15:14. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  20. Wong DL, Tai TC, Wong-Faull DC, Claycomb R, Kvetnansky R. Adrenergic responses to stress: transcriptional and post-transcriptional changes. Ann N Y Acad Sci. 2008 Dec;1148(1):249-56.  PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  21. Papanikolaou NA, Sabban EL. Sp1/Egr1 motif: a new candidate in the regulation of rat tyrosine hydroxylase gene transcription by immobilization stress. J Neurochem. 1999 Jul;73(1):433-6. PubMed, CrossRef
  22. Khachigian LM, Fries JW, Benz MW, Bonthron DT, Collins T. Novel cis-acting elements in the human platelet-derived growth factor B-chain core promoter that mediate gene expression in cultured vascular endothelial cells. J Biol Chem. 1994 Sep 9;269(36):22647-56. PubMed
  23. Tolstanova GM, Ostapchenko LI. Interaction between transcription factors Egr-1 and Sp1 in inflammatory bowel disease pathogenesis. Med Chem. 2010;(3):10-15. (In Ukrainian).

Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.