Ukr.Biochem.J. 2014; Том 86, №6, листопад-грудень, c. 139-146

doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj86.06.139

Активність трипсиноподібних ензимів та желатиназ у щурів із доксорубіциновою кардіоміопатією

15.03.2016   Без категорії   No comments

Ю. А. Гордієнко1, Я. В. Бабець2, А. О. Кулініч1, А. І. Шевцова1, Г. О. Ушакова2

1ДЗ «Дніпропетровська медична академія МОЗ України»;
2Дніпропетровський національний університет імені Олеся Гончара,Україна;
e-mail: gordienko.ju@gmail.com

Проведено дослідження активності трипсиноподібних ензимів (АТПЕ) та желатиназ А і В у плазмі крові, в екстрактах серцевого м’яза, кори головного мозку та мозочка щурів з кардіоміопатією, спричиненою антрацикліновим антибіотиком доксорубіцином на фоні превентивного застосування корвітину та α-кетоглутарату. Показано, що АТПЕ віро­гідно збільшується у плазмі крові та екстракті кори головного мозку за доксорубіцинової кардіоміопатії  (ДКМП), а в екстрактах серцевого м’яза та мозочка – знижується. За умов ДКМП відбувається вірогідне підвищення активності обох желатиназ у плазмі та тканинних екстрактах. Превентивне введення корвітину і α-кетоглутарату спричинює різноспрямовані зміни активності означених ензимів у тканинах серця та мозку. Одержані дані підтверджують гіпотезу про активацію протеолізу за дії антрациклінових антибіотиків і свідчать про вибірковість впливу корвітину і α-кетоглутарату на АТПЕ та желатинази.

Ключові слова: , , , , , ,

Посилання:

  1. Yarovaya GA. Bioregulating functions and pathogenetic role of proteolysis. The physiological role and biochemical mechanisms of limited proteolysis reactions.  Laboratornaya Meditsina (Laboratory Medicine). 2005;(7):81-90. (In Russian).
  2. Rawlings ND, Morton FR, Kok CY, Kong J, Barrett AJ. MEROPS: the peptidase database. Nucleic Acids Res. 2008 Jan;36(Database issue):D320-5. PubMed,  PubMedCentral, CrossRef
  3. Page MJ, Di Cera E. Serine peptidases: classification, structure and function. Cell Mol Life Sci. 2008 Apr;65(7-8):1220-36. Review. PubMed, CrossRef
  4. Novik AA, Kamilova TA, Tsygan VN. Introduction to molecular biology of carcinogenesis. М: Geotar-Med, 2004. 224 p. (In Russian).
  5. Cogni AL, Farah E, Minicucci MF, Azevedo PS, Okoshi K, Matsubara BB, Zanati S, Haggeman R, Paiva SA, Zornoff LA. Metalloproteinases-2 and -9 predict left ventricular remodeling after myocardial infarction. Arq Bras Cardiol. 2013 Apr;100(4):315-21. English, Portuguese. PubMed, CrossRef
  6. Balabanyan VY, Gelperina SE. Basic mechanisms of drug substance delivery to the brain using polymeric nanoparticles. Farmakokinetika i farmakdinamika (Pharmacokinetics and pharmacodynamics). 2012;5(2):3-9. (In Russian).
  7. Kapelko VI, Popovich M. Metabolic and functional basis of experimental cardiomyopathies. Kishinev: Shtiintsa, 1990. P. 6-56. (In Russian).
  8. Veremeenko KN, Goloborod’ko OP, Kizim AI. Proteolysis in normal and pathological conditions. Kiev: Zdorov’ia (Health), 1988. 200 p. (In Russian).
  9. Pat. 83196 UA, ICP G 01 N33. 49 Method of determining gelatinases blood plasma. Shevtsova A. I., Gordienko Yu. A., Shau­lska O. E., Skoromna A. S. Publ. 27.08.2013, Bul. N 16. (In Ukrainian).
  10. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976 May 7;7291-2):248-54. PubMed, CrossRef
  11. Shevtsova AI, Zharikov NY, Gordienko YuA. Experimental study of the corvitin effect under conditions of doxorubicin-induced cardiomyopathy in rats. Mat. of theoretical and practical conference “Actual problems of medicine.” Grodno, Belarus, 2013. P. 386-388. (In Russian).
  12. Kim SH, Lim KM, Noh JY, Kim K, Kang S, Chang YK, Shin S, Chung JH. Doxorubicin-induced platelet procoagulant activities: an important clue for chemotherapy-associated thrombosis. Toxicol Sci. 2011 Nov;124(1):215-24. PubMed, CrossRef
  13. Kennedy S, Wu J, Wadsworth RM, Lawrence CE, Maffia P. Mast cells and vascular diseases. Pharmacol Ther. 2013 Apr;138(1):53-65. Epub 2013 Jan 16. Review. PubMed, CrossRef
  14. Ratcliffe PJ. Oxygen sensing and hypoxia signalling pathways in animals: the implications of physiology for cancer. J Physiol. 2013 Apr 15;591(Pt 8):2027-42.  Review. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  15. Tulsawani R, Bhattacharya R. Effect of alpha-ketoglutarate on cyanide-induced biochemical alterations in rat brain and liver. Biomed Environ Sci. 2006 Feb;19(1):61-6. PubMed
  16. Kovalenko TN, Ushakova GA, Osadchenko I, Skibo GG, Pierzynowski SG. The neuroprotective effect of 2-oxoglutarate in the experimental ischemia of hippocampus. J Physiol Pharmacol. 2011 Apr;62(2):239-46. PubMed
  17. Mukhopadhyay P, Rajesh M, Bátkai S, Kashiwaya Y, Haskó G, Liaudet L, Szabó C, Pacher P. Role of superoxide, nitric oxide, and peroxynitrite in doxorubicin-induced cell death in vivo and in vitro. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2009 May;296(5):H1466-83. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  18. Kandasamy AD, Chow AK, Ali MA, Schulz R. Matrix metalloproteinase-2 and myocardial oxidative stress injury: beyond the matrix. Cardiovasc Res. 2010 Feb 1;85(3):413-23. Review. PubMed, CrossRef
  19. Lakhanpal P, Rai DK. Role of quercetin in cardiovascular diseases. Internet J. Med. Update. 2008;3(1):31-49. CrossRef
  20. Wang L, Cheng X, Li H, Qiu F, Yang N, Wang B, Lu H, Wu H, Shen Y., Wang Y, Jing H. Quercetin reduces oxidative stress and inhibits activation of c Jun N terminal kinase. activator protein 1 signaling in an experimental mouse model of abdominal aortic aneurysm. Mol Med Rep. 2014 Feb;9(2):435-42. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  21. Frontczak-Baniewicz M, Walski M, Madejska G, Sulejczak D. MMP2 and MMP9 in immature endothelial cells following surgical injury of rat cerebral cortex–a preliminary study. Folia Neuropathol. 2009;47(4):338-46. PubMed
  22. Lopes MA, Meisel A, Carvalho FD, Bastos Mde L. Neuronal nitric oxide synthase is a key factor in doxorubicin-induced toxicity to rat-isolated cortical neurons. Neurotox Res. 2011 Jan;19(1):14-22. PubMed, CrossRef
  23. Park J, Zhang Y, Vykhodtseva N, Jolesz FA, McDannold NJ. The kinetics of blood brain barrier permeability and targeted doxorubicin delivery into brain induced by focused ultrasound. J Control Release. 2012 Aug 20;162(1):134-42. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  24. Candelario-Jalil E, Thompson J, Taheri S, Grossetete M, Adair JC, Edmonds E, Prestopnik J, Wills J, Rosenberg GA. Matrix metalloproteinases are associated with increased blood-brain barrier opening in vascular cognitive impairment. Stroke. 2011 May;42(5):1345-50. PubMed, PubMedCentral, CrossRef
  25. Cho JY, Kim IS, Jang YH, Kim AR, Lee SR. Protective effect of quercetin, a natural flavonoid against neuronal damage after transient global cerebral ischemia. Neurosci Lett. 2006 Sep 1;404(3):330-5. PubMed,  CrossRef
  26. Yang Y, Bai L, Li X, Xiong J, Xu P, Guo C, Xue M. Transport of active flavonoids, based on cytotoxicity and lipophilicity: an evaluation using the blood-brain barrier cell and Caco-2 cell models. Toxicol In Vitro. 2014 Apr;28(3):388-96. PubMed, CrossRef
Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.