Ukr.Biochem.J. 2014; Том 86, №6, листопад-грудень, c. 56-65

doi: http://dx.doi.org/10.15407/ubj86.06.056

Стан системи антиоксидантного захисту в плазмі крові та серцевому м’язі щура за дії гістаміну та гіпохлориту натрію

О. І. Бішко, Н. П. Гарасим, Д. І. Санагурський

Львівський національний університет імені Івана Франка, Україна;
e-mail: oliabishko@gmail.com

На фармацевтичному ринку наявний широкий спектр антигістамінних препаратів, проте вони виявляють небажані побічні ефекти. З цієї причини для знешкодження гістаміну в організмі потрібно шукати альтернативні шляхи. Тому нашу увагу привернув розчин гіпохлориту натрію, який є сильним окисним агентом. Метою роботи було дослідити дію гістаміну та гіпохлориту натрію на стан антиоксидантної системи плазми крові та серцевого м’яза щура. Показано, що досліджувані чинники призводять до порушення роботи ензимів антиоксидантної системи. Встановлено, що екзогенне введення гістаміну в дозах 1 та 8 мкг/кг зумовлює зростання активності супероксиддисмутази у плазмі крові впродовж усього досліду. Внаслідок дослідження ензимів, які розщеплюють гідропероксиди та пероксид водню, показано, що за дії гістаміну (у дозі 1 мкг/кг) на 1-шу добу досліду відбувається зростання активності глутатіонпероксидази. Проте на 7-му добу відмічено зростання активності як глутатіонпероксидази, так і каталази. Встановлено, що у плазмі крові щурів за дії гіпохлориту натрію відбувається порушення роботи супероксиддисмутази. Активність ензимів, які відповідають за знешкодження пероксиду водню та гідропероксидів, пригнічується. Внаслідок впливу гістаміну в тканинах серця відбувається розбалансування роботи супероксиддисмутази, зростання активності каталази та зниження – глутатіонпероксидази. Дія гіпохлориту натрію на серцевий м’яз інтактних тварин, а також взаємний вплив гістаміну та гіпохлориту натрію зумовлюють зростання активності супероксиддисмутази та каталази і призводить до значного зниження активності глутатіонпероксидази.

Ключові слова: , , , , , ,


Посилання:

  1. Shahid M, Tripathi T, Sobia F, Moin S, Siddiqui M, Khan RA. Histamine, histamine receptors and their role in immunomodulation: an updated systematic. Open Immunol. J. 2009 Mar;2(1):9-41.  CrossRef
  2. Kaliner MA, Berger WE, Ratner PH, Siegel CJ. The efficacy of intranasal antihistamines in the treatment of allergic rhinitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2011 Feb;106(2 Suppl):S6-S11. Review. PubMed, CrossRef
  3. Menshchikova EB, Lankin VZ, Zenkov NK, Bondar IA, Krugovykh NF, Trufakin VA. Oxidative stress. Prooxidants and antioxidants. M: Word, 2006. 556 p. (In Russian).
  4. Golovchak NP. Free radical processes in the cardiac muscle of poultry for the actions of sodium hypochlorite. Visnyk of the Lviv University. Series Biology. 2013;62:29-37. (In Ukrainian).
  5. Kushnir G. V. Pharmacological action high-purity sodium hypochlorite on animals for chronic T-2 toxicity. Author. thesis. cand. wet. science. L., 2009. 22 р.
  6. Aubut V, Pommel L, Verhille B, Orsière T, Garcia S, About I, Camps J. Biological properties of a neutralized 2.5% sodium hypoclorite solution. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2010 Feb;109(2):e120-5. PubMed, CrossRef
  7. Komarenko VI, Terekhov AA, Voro­byova AP, Yanchuk PI. Investigation of the role of H1-receptor responses in rat liver portal vessels to histamine. Cherk Nat Univ B. Khmelnitsky. Biol. Sci. Series. 2008; 128:54-58. (In Ukrainian).
  8. Nesterova LA, Smurova EA, Manukhin BN. Characterization of specific binding blocker [+H]-quinuclidinylbenzilate M-cholinergic receptors in rat brain cortex membranes. Rep Acad Sci. 1995;343(2):268-271. (In Russian).
  9. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951 Nov;193(1):265-75. PubMed
  10. Kostiuk VA, Potapovich AI, Kovalevа ZhV. A simple and sensitive method of determination of superoxide dismutase activity based on the reaction of quercetin oxidation.  Vopr Med Khim. 1990 Mar-Apr;36(2):88-91. Russian. PubMed
  11. Koroljuk M. A., Ivanovа L. I., Mayorov I. G. Method for determination of catalase activity. Labor Work. 1988;1:16-19. (In Russian).
  12. Moin VM. A simple and specific method for determining glutathione peroxidase activity in erythrocytes. Lab Delo. 1986;(12):724-7. Russian. PubMed
  13. Bishko O., Golovchak N., Sanagurski D. Effect of histamine and sodium hypochlorite on free radical processes in lung tissues of rats. Studiа Biologica. 2013;7(3):97-106. (In Ukrainian).
  14. Dubinin EE. Рroducts of oxygen metabolism in the functional activity of cells (life and death, creation and destruction). Physiological and clinical-biochemical aspects. M. :SРb. Med. Press, 2006. 400 р. (In Russian).
  15. Kotsyumbas I, Velichenko O, Kotsyumbas G. Prospects of application hypochlorite in veterinary medicine. L.: TzOB VF “Afisha”, 2009. 312 p. (In Ukrainian).
  16. Golovchak NP, Tarnovska AV, Sanagurski D I. Lipid peroxidation in living organisms. L: Ivan Franko National University of Lviv, 2012. 250 p. (In Ukrainian).
  17. Victorov A. Adverse effects of modern medicines antihistamines. Modern Problems of Toxicology – 2003. Regime of access: http:. www.medved.kiev.ua. arhiv_mg. 1_2003.htm.
  18. Kitbunnadaj R. Histamine Receptors and Their Ligands. Naresuan Univ. J. 2005;13:41-53.
  19. Golovchak N, Tarnovska A, Bura M, Romaniuk M. Рrooxidant-antioxidant homeo­stasis loach embryos under the action of low-intensity laser irradiation. Phys Alive. 2009;17:76-81. (In Ukrainian).

Creative CommonsThis work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.